标准品复溶后，下一步就是分装保存。手边正好有一包普通的1.5 mL离心管，随手拿几支分装，放-20℃冻起来——这个场景在实验室里太常见了。但就是这一步，可能正在让你的标准品浓度悄悄“打折”。
蛋白质表面存在疏水区域，倾向于与聚丙烯管壁发生非特异性吸附。这种吸附在低浓度条件下尤为突出——浓度越低，管壁结合位点相对越“过剩”，吸附比例越高。
普通离心管对某些蛋白的吸附率可达10%-30%。对于微量蛋白，24小时内的损失可能高达90%。这意味着标准品复溶后如果长时间存放在普通管中，实际浓度可能已远低于标示值。
后果直接体现在标准曲线上：低浓度标准品因吸附损失而信号偏低，标准曲线低端“塌陷”，样本浓度被系统性低估。尤其是接近检测下限的样本，偏差可能足以改变实验结论。
低吸附管通过表面改性降低塑料对蛋白的疏水吸附，是解决管壁吸附最直接的方式。
需要注意的是，不同品牌的低吸附管性能差异较大。选择时应关注产品是否提供了蛋白回收率的验证数据，而非仅看“低吸附”这个名称。部分产品标注的回收率数据基于特定实验模型，实际效果可能因蛋白种类和浓度而异。
硅化处理的离心管也是一种替代方案，但批次间差异可能较大，使用前建议进行验证。
三、添加载体蛋白：辅助策略除了更换管材，添加载体蛋白也是一种有效手段。载体蛋白以高浓度优先占据管壁结合位点，从而保护目标标准品不被吸附。
常用的载体蛋白包括：0.1% BSA、5% HSA、10% FBS，无血清条件下可用5%海藻糖。
需要注意的是，许多试剂盒的标准品稀释液本身已含有载体蛋白。额外添加前应确认与试剂盒体系的兼容性，以说明书为准——过量添加可能干扰抗原-抗体反应。
四、分装操作关键细节
分装体积不宜过小，因为管壁吸附的绝对量虽然不变，但占总蛋白量的比例会随体积减小而升高。20 μL是一个较为安全的低限。
五、专业提醒不同标准品的蛋白种类和配方不同，对吸附的敏感度差异显著，应以产品说明书为第一依据。如果标准曲线低端持续偏低，且已排查了其他因素（如稀释操作、孵育条件等），可以尝试更换低吸附管做一次平行对比验证。
